质粒提取试剂盒 Omega
产品名称： 质粒提取试剂盒 Omega
英文名称：
产品编号： D6942
产品价格： 0
产品产地： 中国
品牌商标： Omega
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使用范围： null
北京索莱宝科技有限公司--实验室产品
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质粒提取试剂盒 Omega
品牌：Omega | 货号：D6942
商品货号： 商品品牌： 规格 基本售价：
D6942-100T Omega 100T 380.00元
产品简介：
试剂盒采用酶法破碎酵母细胞壁和碱裂解法裂解酵母细胞来提取酵母质粒 DNA。所采用的酵母破壁酶能有效地破坏酵母细胞壁，提高酵母质粒 DNA 的产量。吸附柱中采用的硅基质材料能高效、专一地附 DNA，可最大限度去除杂质蛋白质及细胞中其他有机化合物。使用本试剂盒提取的酵母质粒DNA可适用于各种常规的分子生物学实验，包括酶切、PCR、测序、连接和转化等试验。本试剂盒无需使用酚、氯仿等有毒试剂，操作安全。
操作步骤：
使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。溶液YP1在使用前先加入RNaseA（将试剂盒中提供的 RNaseA全部加入），混匀，置于 2-8℃保存。如非指明，所有离心步骤均为使用台式
离心机在室温下离心。
1、取1-5ml酵母培养物（不超过 5×107cells），12000rpm离心 1min，尽量吸除上清（菌液较多时可以通过多次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中）。
2、酵母细胞壁的破除：
A、酶法：向酵母菌体中加入 470ul 山梨醇 Buffer，充分悬浮菌体，加入 25ul 酵母破壁酶和 5ul β-巯基乙醇，充分混匀，30℃处理 1-2h，期间可颠倒离心管混匀数次。12000rpm 离心 1min，弃上清，收集沉淀。向沉淀中加入 250ul 溶液 YP1（请先检查是否已加入 RNaseA） ，充分悬浮沉淀。注意：如果菌块未彻底混匀，会影响裂解导致质粒提取量和纯度偏低。
B、玻璃珠法：向酵母菌体中加入 250ul 溶液 YP1（请先检查是否已加入 RNaseA） ，充分悬浮沉淀。加入 150-200ul酸洗玻璃珠（自备），漩涡振荡 10min。简短离心使玻璃珠沉降到离心管底，吸取上清（如上清有所损失，请用溶液 YP1 补足至 250ul）于另一干净离心管中。
3、向离心管中加入 250ul溶液 YP2，温和地上下翻转 6-8 次使菌体充分裂解。注意：混匀一定要温和，以
免污染细菌基因组 DNA，此时菌液应变得清亮粘稠，作用时间不要超过 5 min，以免质粒受到破坏。
4、向离心管中加入 350ul溶液 YP3，立即温和地上下翻转 6-8次，充分混匀，此时会出现白色絮状沉淀。12000rpm离心 10 min，用移液器小心地将上清转移到另一个干净的离心管中，尽量不要吸出沉淀。注意：溶液 YP3 加入后应立即混合，避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀，可再次离心后取上清。
5、将上一步所得上清液加入吸附柱中，室温放置 2min，12000rpm 离心 1min，倒掉收集管中的废液，吸附柱重新放回收集管中。
6、向吸附柱中加入 700ul 漂洗液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇)，12000rpm 离心 1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
7、向吸附柱中加入 500ul漂洗液，12000rpm离心 1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
8、12000rpm 离心 2min，将吸附柱敞口置于室温或 50℃温箱放置数分钟，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，否则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验如酶切、PCR 等。
9、将吸附柱放入一个干净的离心管中，向吸附膜中央悬空滴加 50-200ul 经 65℃水浴预热的洗脱液，室温放置 2min，12000rpm离心 1min。
10、为了增加质粒的回收效率，可将得到的洗脱液重新加入吸附柱中，室温放置 2min， 12000rpm离心 1min。
注意事项：
1、使用前请先检查溶液 YP2 和溶液 YP3 是否出现混浊，如有混浊现象，可在 37℃水浴中加热几分钟，待溶液恢复澄清后再使用。
2、洗脱缓冲液体积不应少于 50ul，体积过小影响回收效率；洗脱液的 pH值对洗脱效率也有影响，若需要用水做洗脱液应保证其 pH 值在 8.0 左右(可用 NaOH 将水的 pH 值调至此范围)，pH 值低于 7.0 会降低。洗脱效率；DNA产物应保存在-20℃，以防 DNA降解。
3、质粒得率与酵母菌株、质粒拷贝数、培养条件等因素有关。通常酵母质粒拷贝数都很低，一般通过电泳或分光光度计法都很难检测到，可通过 PCR或转化大肠杆菌来检测。
4、DNA浓度及纯度检测：得到的基因组DN**段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的DN**段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA应在OD260处有显著吸收峰， OD260值为 1 相当于大约 50 μg/ml双链DNA、40 μg/ml单链DNA。OD260/OD280比值应为1.7-1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用去离子水，比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。
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